Parasitologie

Résumé du document

Par définition un parasite est un organisme qui vit ou se développe aux dépens de celui qui l'héberge ; il se nourrit des tissus, du sang ou des aliments de son hôte.
La plupart des parasites sévissent dans des pays tropicaux où leur présence est liée aux conditions climatiques (chaleur, humidité) et souvent à une hygiène déficiente des populations.
De nombreux parasites passent sur deux hôtes ou plus au cours de leur cycle biologique : un hôte définitif ou final et un ou plusieurs hôtes intermédiaires aux dépens desquels ils accomplissent une partie de leur cycle de vie.
Les vecteurs sont des hôtes intermédiaires qui transmettent activement les parasites d'un hôte final à l'autre.
Les endoparasites, les ténias par exemple, vivent à l'intérieur de leur hôte tandis que les ectoparasites vivent à son contact.

Extraits

[...] On doit gratter aussi sous l'ongle et au pourtour. Les lambeaux d'ongles sont recueillis dans une boite de Pétri stérile. L'atteinte de l'ongle ou "onyxis" peut être accompagnée d'une atteinte cutanée "périonyxis" caractérisée par un ronflement purulent à la base de l'ongle. Le prélèvement du pus se fait avec une pipette Pasteur ou un écouvillon humecté après pression au niveau de ce bourrelet. Les prélèvements liquides : Ils sont surtout utilisés pour l'ensemencement et la mise en culture. Les prélèvements liquides sont toujours ensemencés d'abord avant d'effectuer l'examen direct de peur d'une contamination. [...]

[...] Répartir dans chaque cupule un volume de 50µl du tampon. Mettre 50µl de la dilution du sérum dans la première cupule, en inclinant l'embout de la micro pipette bien mélanger, reprendre 50µl de la première cupule A et mettre dans la cupule suivante, ainsi de suite on procédera donc à des dilutions de 1/2 en les deux dernières cupules vont contenir les témoins positifs et négatifs. Agiter la micro plaque et on rajoute 25µl de globules rouges normaux (non sensibilisés) dans la première cupule A et 25µl de globules rouges sensibilisés dans toutes les autres cupules (même les cupules contenant les témoins positifs et négatifs). [...]

[...] Toujours éliminer la première goutte de sang. Exercer une pression pour faire couler une autre goutte que l'on déposera sur une lame préalablement dégraissée (les lames seront essuyées avec de la gaze imbibée d'alcool). Recouvrir ensuite la goutte ensuite avec une lamelle et observer au microscope Frottis sanguin/Goutte épaisse 1 Frottis sanguin Confection d'un frottis sanguin : Le prélèvement se fera par piqûre digitale après élimination de la première goutte ou encore par ponction veineuse. Une goutte de sang sera déposée à environ 1 cm de l'une des deux extrémités d'une lame dégraissée. [...]

[...] Lavage : trois bains dans le tampon PBS, chaque bain de 3 à 5 min. Sécher ensuite la lame à l'étuve. Recouvrir chaque spot par 20 de conjugué : dilution au 1/30ème (580 du tampon PBS + 20 du conjugué total). Incuber 30 min à 37°C. Lavage : trois bains dans le tampon PBS. Sécher à l'étuve. Contre coloration par le bleu d'Evans (dilution au 1/1000eme) : 20 dans chaque spot, il permet de masquer les inflorescences non caractéristiques. Incuber 20 min à 37°C. [...]

[...] Milieux d'isolement et d'identification : Milieu Sabouraud-chloramphénicol S.C : Peptone de Chapotaut 10 gr Maltose brut 40 gr Gélose 20 gr Chloramphénicol 0,5 gr Eau distillée 1 litre Pour la préparation de ce milieu, on commence par faire bouillir le mélange eau + peptone pendant quelques minutes, puis on ajoute la gélose et le chloramphénicol et on met à l'autoclave 45 min à 110 - 120°C. On dissout ensuite le maltose dans de l'eau tiède et on le rajoute à la gélose peptonée. On repartit enfin dans des tubes à raison de 10 ml par tube et on stérilise pendant 20 min. Il faut incliner les tubes de façon à obtenir un culot de 1cm. [...]